CD19免疫組化IHC
細胞免疫熒光簡單實驗步驟如下：1. 漂洗血清蛋白H7、2-7、4 37度 PBS 2小時。2. -20度甲醇固定20分鐘后,自然、干燥 10分鐘。3. PBS洗凈：3min×3。4. 1%Triton：25 min~30 min、配成50 ultriton+5 mlpBS。5. PBS洗凈：2×5 min。6. 羊血清封閉：37度，20分鐘。7. 一抗，4度過夜，一般要大于18小時或者37度，1-2小時。8. 4度PBS洗凈，3 min×5次。9. 二抗37度小于一小時。10. 37度 PBS洗凈，3×5 min。11. 涼干封片（封閉液PH8.5）；不管采用何種方法，在使用PBS緩沖液漂洗時，都要漂洗干凈并且要測下pH值，可以使用PBS多清洗幾次，也可以延長PBS清洗時間，如果結果背景較高可以延長漂洗的次數和時。免疫熒光技術可以用于研究免疫相關疾病和自身免疫病。CD19免疫組化IHC
直接免疫熒光：單抗體（一抗）用于免疫染色和檢測目標蛋白。熒光素結合的一抗直接與目標抗原結合，并使用成像顯微鏡觀察。直接免疫熒光的優點：由于無需為兩種抗體選擇不同的物種反應性，從而降低了物種交叉反應性問題。與間接免疫熒光相比，時間縮短（操作步驟減少）。直接免疫熒光的缺點：不允許通過二抗進行信號放大；檢測靈敏度降低；熒光素結合一抗的選擇有限；與使用熒光二抗的檢測相比，更昂貴。間接免疫熒光：使用兩種抗體（一抗和二抗）進行免疫染色并檢測目標蛋白。首先，用特異性一抗標記目標蛋白。然后，熒光素結合的二抗（與一抗具有不同的物種反應性）識別結合的抗原-抗體復合物并與一抗結合。由于一個以上的二抗可以與一抗結合，熒光信號被放大，提供了更高的檢測靈敏度。N-cad免疫檢測免疫熒光技術具有高靈敏度和高特異性，可以檢測非常低濃度的目標分子。
免疫熒光技術又稱熒光抗體技術，是標記免疫技術中發展較早的一種。它是在免疫學、生物化學和顯微鏡技術的基礎上建立起來的一項技術。很早以來就有一些學者試圖將抗體分子與一些示蹤物質結合，利用抗原抗體反應進行組織或細胞內抗原物質的定位。免疫熒光技術是標記免疫技術中發展較早的一種．它是在免疫學、生物化學和顯微鏡技術的基礎上建立起來的一項技術。Coons等于1941年初次采用熒光素進行標記抗體獲得成功。經過幾十年的發展，該技術已相當成熟。用熒光抗體示蹤或檢查相應抗原的方法稱熒光抗體法；用已知的熒光抗原標記物示蹤或檢查相應抗體的方法稱熒光抗原法。這兩種方法總稱免疫熒光技術。在實際工作中熒光抗原技術很少應用，所以人們習慣將熒光抗體技術稱為免疫熒光技術
細胞免疫熒光主要用于蛋白定位研究和細胞內信號轉導，細胞免疫熒光技術是利用免疫技術和熒光標記技術相結合，原理就是利用抗原-抗體反應之后，采用熒光標記，標記完成后，顯微鏡下觀察細胞內某種抗原成分的多少，從而做出一個定位研究，也可以為細胞內信號傳導提供一個明確的指導，細胞免疫熒光具有敏感性強、特異性高、速度快的特點，是目前比較常用的組織學技術，也是比較精確的。免疫熒光染色的主要原理是利用抗原抗體之間的特異性結合來顯示目的蛋白，主要包括蛋白和一抗結合，其次是帶有熒光基團的二抗識別并結合一抗，熒光顯微鏡下即可觀察到熒光。熒光抗體技術具有高靈敏度和高特異性，可以實現精確的免疫檢測。
熒光的猝滅：熒光分子的輻射能力在受到激發光較長時間的照射后會減弱甚至猝滅，這是由于激發態分子的電子不能回復到基態，所吸收的能量無法以熒光的形式發射。一些化合物有天然的熒光猝滅作用而被用作猝滅劑，以消除不需用的熒光。因此熒光物質的保存應注意避免光（特別是紫外光）的直接照射和與其他化合物的接觸。在熒光抗體技術中常用一些非熒的色素物質如亞甲藍、堿性復紅。伊文思藍或低濃度的過錳酸鉀、碘溶液等對標本進行得當復染，以減弱非特異性熒光本質，使特異熒光更突出顯示。免疫熒光技術可以用于研究心血管系統的疾病和醫治。CRT(Calreticulin)免疫熒光IF
免疫熒光技術可以同時檢測多個目標分子，通過不同顏色的熒光染料進行標記。CD19免疫組化IHC
免疫熒光通透（目的是使抗體進入胞內），0.5%TritonX-100(一種去垢劑，用PBS配制)室溫通透20min（針對胞內抗原，若是細胞膜上表達的抗原則省略該步驟）；除了TritonX-100，也可作為通透劑，并且固定后的樣品不需要通透。封閉（減少一抗和二抗與非特異位點進行結合），通透后用PBS浸洗玻片3次，每次3min，吸水紙吸干PBS，在玻片上滴加山羊血清，室溫封閉30min。常用的封閉液包括：與二抗同一來源的血清、BSA或者是羊血清。從封閉開始所有的步驟，一定要注意樣品的保濕，避免樣品的干燥，否則極易產生較高的背景。醛類固定的樣品，在用一抗孵育前用含0.3M甘氨酸的封閉液進行封閉。CD19免疫組化IHC
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